Puromycin(10mg/mL)
CatalogNumber：PS610
01/Puromycin嘌呤霉素PS610產品概述：
Puromycin是來源于Streptomycesalboniger的一種氨基核苷類抗生素，中文名為嘌呤霉素。嘌呤霉素是氨酰-tRNA分子3′末端的類似物，能夠與核糖體的A位點結合并摻入到延伸的肽鏈中。嘌呤霉素同A位點結合后，不會參與隨后的任何反應，從而導致蛋白質合成的提前終止并釋放出C-末端含有嘌呤霉素的不成熟多肽，從而殺死革蘭氏陽性菌、各種動物和昆蟲細胞。
Puromycin常用于篩選通過質粒轉染、病毒感染、轉化等方法能表達pac基因（puror）的真核或原核多克隆或單克隆細胞。pac基因編碼嘌呤霉素N-乙酰轉移酶(PAC，PuromycinN-acetyl-tranferase)，賦予機體對嘌呤霉素產生抗性。這一特性目前普遍應用于篩選表達pac基因的哺乳動物穩定細胞株。嘌呤霉素在細胞穩轉株篩選中的普遍應用與慢病毒載體的特性有關，現在很多商業化的慢病毒載體都攜帶pac基因(一般在質粒圖譜上標記為puror)，從而利用嘌呤霉素篩選特定基因的穩定表達細胞株。Puromycin的特點是快速作用于細胞，一般2天內可以殺死99%的不表達pac基因的細胞。Puromycin不僅用于穩定細胞株的篩選，也用于穩定細胞株的維持。在某些特定情況下，嘌呤霉素也可以用來篩選轉化攜帶pac基因質粒的大腸桿菌菌株、酵母菌株等。
本品是無菌的Puromycin嘌呤霉素（10mg/mL）鹽酸鹽溶液，經過濾除菌，可以直接用于細胞培養。
02/產品組分
03/保存條件：冰袋（wetice）運輸。-20℃保存，有效期12個月。建議分裝保存，避免反復凍融。
04/產品特點
即用型試劑，無需進行試劑配置，簡單方便。
無菌制劑，可直接加入細胞使用。
05/Puromycin 嘌呤霉素（10 mg/mL）實驗步驟
一、Dose-responsecurveorkillcurve嘌呤霉素劑量反應曲線的確定(以shRNA轉染或者慢病毒感染為例）
嘌呤霉素的有效篩選濃度跟細胞類型、生長狀態、細胞密度、細胞代謝及細胞所處細胞周期等因素相關。為了篩選到穩定表達的shRNA或感染病毒的細胞株，確定殺死未轉染/感染細胞的最小濃度嘌呤霉素非常重要。對于初次使用的細胞，一般需要通過實驗來確定適合自身實驗體系的劑量反應曲線(dose-responsecurveorkillcurve)。
1.提前一天在24孔板中以5~8×104cells/孔的密度接種細胞，設置劑量梯度及復孔，37℃5%CO2細胞培養箱內培養過夜。
2.次日，將培養過夜后的細胞更換含不同濃度嘌呤霉素的篩選培養基（新鮮配置），如0、1、2.5、5、7.5、10、15、20μg/mL等濃度梯度，設置至少5個濃度梯度，37℃5%CO2細胞培養箱中繼續培養。
3.由于嘌呤霉素可以快速作用于細胞，一般2天內可以殺死99%的未表達pac基因的細胞，所以在添加嘌呤霉素后的1-2天就可以觀察細胞存活率，從而確定有效殺死正常細胞的藥物最小濃度。如果細胞耐藥性比較強，需要每日監測細胞，觀察存活細胞率，約2-3天更換新鮮的篩選培養基，一般4-10天內即可確定嘌呤霉素的最小濃度。
二、建議使用濃度
哺乳動物細胞：1-10μg/mL，最佳濃度需根據嘌呤霉素劑量反應曲線來確定。
大腸桿菌：LB瓊脂培養基篩選穩定轉化pac基因的大腸桿菌，使用濃度為125μg/mL。
?使用嘌呤霉素篩選大腸桿菌穩轉株需要精確的pH值調節，并受宿主細胞本身的影響。
三、哺乳動物穩定表達細胞株的篩選
轉染含有pac基因的質粒或者感染含有該基因的病毒后，即可使用嘌呤霉素篩選穩定表達株。
1.細胞轉染或感染48小時后，將細胞置于含有適當濃度嘌呤霉素的新鮮培養基中培養，此為處理組。
?當細胞處于分裂活躍期時，抗生素作用明顯。細胞過于密集，抗生素產生的效力會明顯下降，所以細胞的密度最好不超過35%。轉染或感染48小時后，如果細胞過密也可以消化后重新接種細胞，培養過夜后即可進行嘌呤霉素篩選。
?建議同時做一個空白正常細胞的對照組。
2.每隔2-3天，更換含有嘌呤霉素的培養基。
3.篩選2-10天后，對照組正常細胞應該100%死亡，處理組中存活的細胞為表達pac基因的細胞。然后根據實驗目的進行多克隆或單克隆細胞的篩選。
?應每日進行細胞生長狀態的觀察。嘌呤霉素的篩選至少需要24小時，有效濃度嘌呤霉素的篩選周期一般在2-10天。
4.待細胞可以穩定生長后，嘌呤霉素的濃度可以減半用于后續的培養。在得到穩定表達細胞株后，一般建議嘌呤霉素也須持續加入，并2-3天更換含有嘌呤霉素的新鮮培養液。
06/適用范圍
Puromycin嘌呤霉素（10mg/mL）普遍應用于穩定細胞株的篩選和維持，也可以用來篩選轉化攜帶pac基因質粒的大腸桿菌菌株、酵母菌株等。
07/注意事項
1.為了您的健康安全，請規范操作，穿戴實驗服與手套開展實驗。
2.本產品對人體有害，操作時請小心，并注意有效防護以避免直接接觸人體或吸入體內。
3.本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及治療。
08/Puromycin 嘌呤霉素（10 mg/mL）實驗案例分析
1.提前一天使用10cm細胞培養皿培養ViralStarsLentivirusPackagingCellLine（CL110001），待細胞密度為75%左右開始包裝慢病毒。
2.使用ViralStarsLPLentivirusPackagingKit（LP110-10）進行慢病毒包裝，具體步驟參考LP110-10產品說明書。
3.收集慢病毒上清液，300xg離心10分鐘以除去細胞碎片，0.22μm濾器過濾，使用ViralStarsLCLentivirusConcentrationSolution慢病毒濃縮試劑盒（LC110R）進行20倍濃縮，使用1mLViralStarsLSLentivirusStorageSolution（LS110R）重懸慢病毒顆粒。
4.提前一天在24孔板中鋪Hela細胞，使用上述制備的慢病毒感染目的細胞HeLa。在EP管中做病毒10倍梯度稀釋，連續6個稀釋梯度。稀釋方法如下：準備6個?菌EP管，每個EP管中加?450μL新鮮的*培養基（含10μg/mLpolybrene），取待測定病毒液50μL加?到第?個EP管中（標記50μL），混勻后取50μL病毒稀釋液加?到第?個EP管中（標記5μL），以此類推，直到稀釋到最后?管。棄去24孔板中原有的培養基，將稀釋好的病毒依次加入孔中，并做好標記，??操作，不要吹起細胞，置于培養箱中培養16h。
5.慢病毒感染16h后，吸去帶病毒的培養基，在每個孔中再加入?500μL?預熱的新鮮*培養基。
6.使用含puromycin（5μg/mL）的篩選培養基進行篩選，對篩選7天后的細胞進行結晶紫染色，并拍照記錄，實驗結果如圖2所示。
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